martes, 24 de abril de 2012

2.3.2  Selección de plantas madres
Elegir las mejores plantas, las mas grandes, libres de patógenos, que estén vigorosas, la rapidez en el crecimiento, la producción de callos, la resistencia a enfermedades, etc.

              2.3.3     explante
Tejido removido de un organismo y transferido apara su crecimiento a un medio artificial de nutrientes.
Para el medio de cultivo se debe elegir el explante o la parte de la planta que se va ha sembrar: semilla, raíz, hoja, yemas, tallos, óvulos y anteras, segmentos nodales.

              2.3.4   siembra del explante
Una vez que se tienen los explantes estos deben de ser desinfestado correctamente para evitar la proliferación de contaminantes biológicos (hongos, bacterias, y levaduras principalmente) los cuales afectan el crecimiento y desarrollo del explante.

               2.3.5    condiciones de incubación
·         luz: 500 lux.
·         temperatura: 18 – 25 ºC.
·         polaridad: debe de conservar la polaridad de la planta madre.
·         fase gaseosa: es el espacio de aire que se encuentra en el frasco, en este caso en el medio de cultivo el intercambio de aire con el interior debe de ser muy nulo.
·         Humedad: debe de ser 100 % dentro del frasco.
·         Sub cultivo: con el paso del tiempo los explantes pierden el poder vegetativo (multiplicación) y aumentan las mutaciones.

           2.3.6  Cambios fisiológicos del explante
En el explante como se encuentra encerrado en el frasco y no esta acostumbrado a los cambios del ambiente, cuando es sembrado en el medio ambiente no estará acostumbrado a los parámetros del medio debido a que dentro del frasco no corre aire.
·         El explante tendrá la cutícula más delgada y la epidermis estará desorganizada.
·         El parénquima será ineficiente para la fotosíntesis.
·         Los estomas no funcionaran al 100 %.
·         La planta sufrirá vitrificación y estas no serán muy viables.
·         Las raíces estarán más delgadas.
·         El color de la planta será mas claro.
·         La planta estará más inchada.

           2.3.7     trasplante al sustrato
Si se planta el explante en el campo o vivero la planta muere en 7 minutos.
Para que la planta sobreviva se debe primeramente aclimatar para que se endurezca durante 4 a 8 semanas siguiendo estos pasos.
1.    se controla la luz desde 20% hasta el 100% durante un tiempo, empezando desde el 20% hasta llegar 100% para que se acostumbre.
2.    En las primeras dos semanas el explante se riega con m.s. 25% diluido en el agua de riego.
3.    La humedad relativa se mantiene en 100 con nebulizadores esto se hace regando con partículas mas pequeñas de agua (roció de agua).
4.    Las raíces del explante se deben de cortar para que crezcan nuevamente agregándole enrraizador.



2.3     Establecimiento C.T.V.

El explante a sembrar en el medio de cultivo es el segmento nodal. Este debe llevar parte del tallo, de peciolo, yema axilar, etc.

Los principales factores que afectan el C.T.V.
·         Asepsia: limpieza del medio, material, equipo y explante.
·         Genotipo: características propias del explante.
·         Efecto de posición y competencia.
·         El explante: tamaño, fuente, edad fisiológica.
·         Medio de cultivo.
·         Luz.
·         Temperatura.
·         Polaridad.
·         Fase gaseosa.
·         Humedad.
·         Sub cultivo.
·         Estación.

2.3.1    Etapas del C.T.V.

·   ETAPA 0; Establecimiento de plantas donadoras: esta etapa consiste en plantar un vegetal y tenerlo en asepsia en un lugar (vivero) protegida contra insectos para que no se contamine y tomar el explante de ahí.

·   ETAPA 1; Instalación aséptica (in vitro): instalación aséptica del explante al medio de cultivo.

·    ETAPA 2; multiplicación: cuando la planta crece en el medio de cultivo y esta se puede propagar nuevamente.

·     ETAPA 3; Enraizamiento: la planta se deja enraizar aplicando auxinas.

·      ETAPA 4; Adaptación a campo: cuando ya esta enraizada se planta en un vivero (maceta) y a las 2 o 6 semanas se planta en el campo.


2.2 Esterilización

Son una serie de métodos físicos-químicos que sirven para eliminar los microorganismos y las esporas de la superficie de instrumentos y medios de cultivo.

Desinfección: cuando a un objeto se le remueve la suciedad o microorganismos, los objetos son solo material inerte “bisturí”.

Desinfestación: es cuando remueven superficialmente los microorganismos con métodos suaves pero solamente a vegetales y se puede utilizar: HgCl2, NaClo, alcohol.

           2.2.1     Tipos de esterilización

Físicos:

·         Fuego directo: mechero
·         Agua hirviendo
·         Bacto-incinerador
·         Luz u.v.
·         Muflas (estufas)
·         Filtración: compuestos termoviles
·         Calor húmedo (autoclave) (olla de presión)

Químicos:

·         Oxido de etileno
·         Hipoclorito de sodio
·         Hipoclorito de calcio
·         Ozono
·         HgCl2
·         Peróxido de hidrogeno
·         Nitrato de plata
·         Yodex
·         Aldehído
·         Fenol
·         Alcohol etanol
   


             2.2.1     Factores que intervienen en el proceso de esterilizacion

       Factores que intervienen en el calor húmedo:
·         Temperatura: 121°c
·         Tiempo: 20´2
·         Presión: 15 psi (1.2kg/cm2)

lunes, 12 de marzo de 2012

2.1.6. Preparación de los medios de cultivo

2.1.6. Preparación de los medios de cultivo


Para la preparación de los medios de cultivo se necesita tener todos los el equipo y material en perfectas condiciones de asepsia, el agua a utilizar debe de estar debidamente destilada.

Primeramente se agregaran 100 ml de agua en un recipiente esterilizado para no tener contaminación en el medio, después agregar las soluciones stock preparadas anteriormente, añadir la sacarosa, después se debe aforar a 350 ml en una probeta, después en el recipiente medir el pH, este debe de estar entre 5.7 y 6.0, pero si no esta entre los parámetros indicados este se debe de ajustar con un acido (HCL) si esta por arriba de 6.0, pero si tiene menos de 5.7 se debe agregar una base (NaOH) (KOH) para ajustarlo en los parámetros indicados, después se debe calentar hasta 50-70 ºC y agregar el phytagel en pocas cantidades y con ayuda de un agitador magnético y agregándolo en pocas cantidades para evitar que se hagan grumos en el medio, cuando empiece a hervir dejar de 1 a 2 minutos y después apagar y dejar enfriar un poco y después vaciar 25 ml en varios frascos y cuando se termine de vaciar tapar los frascos y sellar para evitar contaminación y guardar en un refrigerador sino se va a esterilizar en ese momento.

jueves, 1 de marzo de 2012

TAREA:TIPOS DE MEDIO DE CULTIVO

SEP                                                    SNEST                                                DGEST

INSTITUTO TECNOLOGICO DE CIUDAD ALTAMIRANO




TIPOS DE MEDIO DE CULTIVO



QUE PRESENTAN:
VILLA LOPEZ ERISAEL. 08930298




LICENCIATURA EN BIOLOGIA
VIII SEMESTRE






Ciudad Altamirano, Gro. México. Marzo 2


QUIMICAMENTE DEFINIDOS:

·         Knudson (1946): El primer medio conocido, es el adecuado para el crecimiento de  orquídeas. Bastante pobre en sales

Macronutrientes
(NH4)2SO4
0.5 g/l
MgSO4
0.122 g/l
Ca(NO3)2
0.694 g/l
KH2PO4
0.250 g/l
Micronutrientes
KI
0.83 mg/l
H3BO3
0.056 mg/l
MnSO4.H2O
5.68 mg/l
MoO3
0.016 mg/l
CuSO4.5H2O
0.062 mg/l
FeSO4.7H2O
25.0 mg/l


·         White (1963): Es uno de los medios, si no el mas, diluido de que se dispone, y por lo tanto de uso complementario al MS. Se elaboró para cultivo de raíces de tomate.
Macronutrientes
Ca(NO3)24H2O
0.3 g/l
KNO3
0.08 g/l
MgSO4.7H2O
0.72 g/l
Na2SO4
0.2 g/l
NaH2PO4.H2O
0.019g/l
Micronutrientes
KCl
65 mg/l
KI
0.75 mg/l
H3BO3
1.3 mg/l
MnSO4.7H2O
7 mg/l
ZnSO4.7H20
3 mg/l
Na2MoO4.2H2O
0.25 mg/l
CuSO4.5H2O
0.025 mg/l
CoCl2.6H2O
0.025 mg/l
Na2.EDTA
37.3 mg/l
FeSO4.7H2O
27.8 mg/l


·         B5 (Gamborg, 1970-1976): Gamborg trabajó activamente en la elaboración de medios, a los que dio diferentes números. EL B5 fue formulado para cultivo de callo de soja.
Macronutrientes

(NH4)2SO4
0.134 g/l
KNO3
2.528 g/l
MgSO4.7H2O
0.246 g/l
CaCl2.aq
0.15 g/l
KH2PO4
0.15 g/l
Micronutrientes

KI
0.75 mg/l
H3BO3
3.0 mg/l
MnSO4.H2O
10 mg/l
ZnSO4.7H20
2.0 mg/l
Na2MoO4.2H2O
0.25 mg/l
CuSO4.5H2O
0.025 mg/l
CoCl2.6H2O
0.025 mg/l
Na2.EDTA
37.3 mg/l
FeSO4.7H2O
27.8 mg/l


MS (murashige y Skoog, 1962): Es el medio más conocido; se elaboró tomando el cultivo in vitro de tabaco como modelo y siguiendo un procedimiento cuantitativo se determinaron las concentraciones mas adecuadas de todos los nutrientes. Es apto para la mayoría de las especies, por lo que es de amplia utilización, excepto para las más sensibles a la salinidad ya que se caracteriza por tener una elevada concentración salina. En esos casos puede recurrirse a otros medios o simplemente utilizarlo diluido (1/2 MS, 1/4 MS).

WPM (Lloyp y McCown 1980): Se elaboró para el cultivo de tallos de plantas leñosas y arbustivas, tipos de plantas para las que está especialmente adaptado
KM8p (Kao y Michayluk 1982): Kao y Michayluk abordaron la dificultad de lograr la viabilidad los protoplastos cultivados in vitro, hasta entonces muy limitada, desde el punto de vista de la optimización del medio, y formularon varios; el más exitoso fue el KM8p. Su característica principal y distintiva de los medios hasta entonces formulados es la gran diversidad de nutrientes que contiene, muchos de ellos no esenciales para el desarrollo de las plantas, pero que si han resultado limitantes en el cultivo de sus protoplastos.

Medio CNEL: Medio líquido para el cultivo de la caña de azúcar en la fase de establecimiento.

Medio  PLML: Medio líquido para el cultivo de plátano enla fase de multiplicación.

Medio CNMS: Medio sólido para el cultivo de caña de azúcar en la fase de multiplicación.

Medio PNCL: Medio líquido para el cultivo de piña en la fase de crecimiento.

Medio PAMS: Medio sólido para el cultivo de papa en fase de multiplicación.





QUIMICAMENTE INDEFINIDOS:

Fibra de coco: la fibra de coco se utiliza mucho como medio de cultivo. Su popularidad día a día crece por sus resultados impresionantes y la versatilidad de uso. La fibra retiene mucha humedad permitiendo una excelente aeración y drenaje del sistema. El coco presenta de manera natural hormonas que promueven el desarrollo saludable de la raíces de la planta. Este medio de cultivo puede ser utilizado solo o en la mezcla con algún otro medio de cultivo.

agua de coco 

endosperma liquido de indias

aseina hidrolizada

extractos de levadura



BIBLIOGRAFÍA

  • Anónimo NN. T5.Medios. 01/03/2012. http://cv.udl.cat/cursos/76304/t5/t5.htm
  • Anónimo NN. Catalogo de medios de cultivo. 01/03/2012. http://www.biocen.cu/producto/indicemc/lmcp7.htm


practica 2

SEP                                                    SNEST                                                DGEST

INSTITUTO TECNOLOGICO DE CIUDAD ALTAMIRANO



PRÁCTICA No.2.
PREPARACIÓN DE SOLUCIONES MADRES.


QUE PRESENTAN:
CARMEN MONDRAGON ÁNGEL. 08930110

HILARIO CASTAÑEDA SEVERIANO. 08930118

JAIMES YAÑEZ NEREO. 08930120

MEDRANO ALONZO AGUSTÍN. 08930122

VILLA LOPEZ ERISAEL. 08930298



LICENCIATURA EN BIOLOGIA
VIII SEMESTRE




Ciudad Altamirano, Gro. México. Febrero del 20


RESUMEN

En la preparación de soluciones madres es con la finalidad de tener el conocimiento de los diferentes componentes que existen en los medios de cultivo, para poder preparar estas soluciones es necesario saber que tipo de compuestos se van a agregar, en ocasiones se requieren concentraciones muy bajas de alguno de ellos, por lo que es necesario preparar soluciones a una elevada concentración y a partir de esta diluirla hasta la concentración requerida. Así mismo como el uso adecuado de las diferentes técnicas y los reactivos para saber la función nutricional de cada una de estos medios de cultivo. Al preparar los  reactivos sulfato-férrico y EDTA estos son aforados con agua destilada a 200ml, posteriormente son agregados a una botella color ámbar y al refrigerador a 4º c.

SUMMARY
in the preparation of stock solution is in order to have knowledge of the different components that exist in the culture media in order to prepare these solutions is necessary to know what type of compounds to be added, sometimes require very low concentrations any of them, making it necessary to prepare highly concentrated solutions and from this dilution to the required concentration. Likewise the appropriate use of different techniques reagents to know the nutritional role of each of these culture media. In preparing reagents ferric sulfate and EDTA these are graduated to 200 ml whit distilled water, are then added an amber bottle and refrigerated at 4º c.






INDICÉ

I.              ANTESEDENTES**********************************************************4-7

II.            DEFINICIÓN DEL PROBLEMA*********************************************8

III.           OBJETIVO (S)****************************************************************9

IV.          JUSTIFICACION************************************************************10

V.           FUNDAMENTÓ TEÓRICO*********************************************11-12

VI.          MATERIALES Y MÉTODOS*******************************************13-14

VII.         RESULTADOS**********************************************************15-16

VIII.       CONCLUCIONES Y RECOMENDACIONES*****************************17

IX.          FUENTES CONSULTADAS***********************************************18

X.           ANEXOS*********************************************************************19




 I. ANTESEDENTES
CULTIVO IN VITRO: PREPARACIÓN DE SOLUCIONES MADRE (MURASHIGE & SKOOG 1962)

Las soluciones deben prepararse con mucho cuidado y precisión. Las sales deben pesarse en una balanza granataria (precisión= 0.01 g) y en la balanza analítica se pesaran las vitaminas y reguladores de crecimiento (precisión = 0.0001 g). La conservación de las soluciones madres se hará de 4-5 C. en el refrigerador, es recomendable no prolongar por mas de tres meses la conservación de las soluciones madres de sales minerales. Las que contengan vitaminas y sustancias de crecimiento estables podrán conservarse un máximo de 4 semanas.

1.1 MACRONUTRIENTES
Se prepara el material de vidrio a utilizar (Erlenmeyer de 1 L., pipetas de varios tamaños), estos deben estar esterilizados, y secos. Se preparan los otros materiales a utilizarse (papel de aluminio cortado, piseta, balanza analítica, reactivos, espátula).
Se enciende la balanza analítica. Se coloca un cuadrado de papel aluminio y se encera la balanza. Una vez que la balanza esta en “0”, se procede a pesar el reactivo. Cuando se tiene el peso deseado se retira el mismo en el papel aluminio en el cual se peso y se lo reserva, hasta, terminar de pesar todos. Una vez que se ha terminado de pesar todos, se procede a preparar la solución de macro nutrientes.
Primeramente se lava el Erlenmeyer con agua destilada y se coloca un poco de agua destilada, aproximadamente 100 ml.
Se agrega los reactivos uno a uno, siempre limpiando el papel aluminio con la Piseta, para asegurar que no quede nada pegado en el mismo. Cuando se han agregado todos los reactivos, se enraza con agua destilada hasta completar 1 L. y con un pedazo de papel de aluminio se tapa el Erlenmeyer y se procede a mezclar; se puede utilizar un agitador magnético.

1.2. MICRONUTRIENTES
Se prepara el material de vidrio a utilizar (Erlenmeyer de 1 L., pipetas de varios tamaños), estos deben estar esterilizados, y secos. Se preparan los otros materiales a utilizarse (papel de aluminio cortado, piseta, balanza analítica, reactivos, espátula).
Se enciende la balanza analítica. Se coloca un cuadrado de papel aluminio y se encera la balanza. Una vez que la balanza esta en “0”, se procede a pesar el reactivo. Cuando se tiene el peso requerido se retira el mismo en el papel aluminio en el cual se peso y se lo reserva, hasta, terminar de pesar todos. Es importante que en los reactivos para la solución de micronutrientes se pese el valor requerido, porque con solo 1 miligramo de mas, o de menos, puede alterar el resultado final. Una vez que se ha terminado de pesar todos, se procede a preparar la solución de micronutrientes.
Primeramente se lava el Erlenmeyer con agua destilada y se coloca un poco de agua destilada. Se agrega los reactivos uno a uno, siempre limpiando el papel aluminio con la Piseta, para asegurar que no quede nada pegado en el mismo.
Cuando se han agregado todos los reactivos, se enraza con agua destilada hasta completar 200 ml. Con un pedazo de papel de aluminio se tapa el Erlenmeyer y se procede a mezclar; se puede utilizar un agitador magnético.

1.3. QUELATO DE HIERRO
Se prepara el material de vidrio a utilizar (Erlenmeyer, agitador, rejilla de asbesto), estos deben estar esterilizados, y secos. Se preparan los otros materiales a utilizarse (papel de aluminio cortado, piseta, balanza analítica, reactivos, espátula).
Se enciende la balanza analítica. Se coloca un cuadrado de papel aluminio y se encera la balanza. Una vez que la balanza esta en “0”, se procede a pesar el reactivo. Cuando se tiene el peso requerido se retira el mismo en el papel aluminio en el cual se peso y se lo reserva, hasta, terminar de pesar todos.
En un Erlenmeyer se coloca el agua y el EDT y se lo lleva al fuego sobre una rejilla de asbesto. Cuando ha hervido se le adiciona el sulfato de hierro . Cuando vuelve a hervir se retira del fuego se deja enfriar. Se enrraza a 100 ml y se coloca en un envase color Ámbar para evitar la degradación de los componentes.

1.4. VITAMINAS.
Se prepara el material de vidrio a utilizar (Erlenmeyer de 100 mL., pipetas de varios tamaños), estos deben estar esterilizados, y secos. Se preparan los otros materiales a utilizarse (papel de aluminio cortado, piseta, balanza analítica, reactivos, espátula).
Se enciende la balanza analítica. Se coloca un cuadrado de papel aluminio y se encera la balanza. Una vez que la balanza esta en “0”, se procede a pesar el reactivo. Cuando se tiene el peso deseado se retira el mismo en el papel aluminio en el cual se peso y se lo reserva, hasta, terminar de pesar todos. Una vez que se ha terminado de pesar todos, se procede a preparar la solución de macro nutrientes.
Primeramente se lava el Erlenmeyer con agua destilada y se coloca un poco de agua destilada. Se agrega los reactivos uno a uno, siempre limpiando el papel aluminio con la Piseta, para asegurar que no quede nada pegado en el mismo. Cuando se han agregado todos los reactivos, se enraza con agua destilada hasta completar 200 ml. y con un pedazo de papel de aluminio se tapa el Erlenmeyer y se procede a mezclar; se puede utilizar un agitador magnético.

1.5. HORMONAS.
Las Auxinas y Giberelinas se disuelven con alcohol antiséptico (70º)
G3 10MG / ALCOHOL 5ML + AGUA DESTILADA 5 ML
ANA 12 MG / ALCOHOL 3 ML + AGUA DESTILADA 9 ML.
AIA 13 MG / ALCOHOL 5 ML + AGUA DESTILADA 8 ML.
Las Citocininas se disuelven con clorhídrico
BAP 10 MG…..HIDROXIDO 4 ML + AGUA DESTILADA 6 ML
Una vez preparadas las hormonas se las mantiene en congelación y al momento de utilizarlas se las calienta sobre una rejilla de asbesto las que se han congelado.


II. DEFINICIÓN DEL PROBLEMA

Debido al elevado número de compuestos que incluye  la formulación de las sales minerales que se emplea para un medio en particular (ej. Murashige y Skoog (MS, 1962)). Y a que algunos de ellos se emplean a muy baja concentración, resulta más práctico preparar soluciones madre o "stocks" concentrados. Esto hace más rápida la futura preparación de medios y minimiza los errores (debidos a las numerosas pesadas de cantidades muy pequeñas).



III.OBJETIVO(S)
3.1. Objetivo(s) generales
- En esta practica realizaremos la preparación de las soluciones madre, patrón o estándar.


3.2 Objetivos específicos
-conocer los diferentes componentes del medio de cultivo y su naturaleza química y bioquímica.
-manejar las técnicas básicas a través del uso adecuado de reactivos.
-comprender la importancia nutricional de los componentes de los medios de cultivo.




IV. JUSTIFICACION
Un método de hacer menos tedioso el trabajo consiste en preparar lo que se conoce como "soluciones madre" de algunos de estos componentes. Estas soluciones tienen una concentración que suele ser 10, 100 e incluso 1000 veces superior a la concentración final del medio. Su ventaja no estriba sólo en el hecho de que hay que pesar menos veces cada vez que se prepara el medio sino también la exactitud de la pesada ya que algunos compuestos están tan diluidos en la solución final, que la pesada que habría que hacer estaría por debajo de los límites de exactitud de las balanzas de precisión.
Las soluciones madre se conservan en frigorífico y en bote topacio durante algunos meses, desechándose ante cualquier señal de precipitación.
Se suelen preparar soluciones madre de las sales minerales, los aminoácidos, hormonas, vitaminas y hexitoles, mientras que la fuente de carbono y el agente gelificante se pesan cada vez ya que se necesitan en cantidades muy elevadas y no se conservan bien en solución.
En el caso de las hormonas es mejor preparar una solución madre de cada una de ellas y medir volúmenes determinados y congelarlos en un frigorífico de 4 estrellas.




V. FUNDAMENTO TEORICO
Un medio de cultivo consiste en un gel o una solución que cuenta con los nutrientes necesarios para permitir  el crecimiento de células vegetales. Según que se quiera hacer crecer el medio requiere unas u otras condiciones. Generalmente se presentan desecados en forma de polvo fino o granular antes de ser preparados, al prepararse podemos encontrarlos en estado solido, semisólido y liquido. El objetivo último del medio es variado: antibiograma, identificación, multiplicación.


5.1 CLASIFICACIÓN:

5.1.1 SEGÚN SU ESTADO FÍSICO (CONSISTENCIA).

1) Medios líquidos: se denominan por esta razón caldos.
2) Medios sólidos: Se preparan a partir de los medios líquidos, agregándoles un agente gelificante. Los más utilizados son la gelatina y el agar. Gelatina: Es una proteína animal obtenida de los huesos.
3) Medios semisólidos: Se preparan a partir de los medios líquidos, agregando a éstos un agente solidificante en una proporción menor que para preparar medios sólidos.

Según las sustancias que entren a formar parte en su composición, los medios de cultivo pueden ser clasificados en:
1) Medios complejos: Fueron los primeros utilizados, y los más empleados se preparan a partir de tejidos animales, y más raramente de vegetales. Su composición no es exactamente definida, y por consiguiente no es rigurosamente constante. Esto puede tener ciertos inconvenientes en condiciones experimentales, donde la reproductibilidad no podrá ser exacta. En la práctica corriente estos medios dan excelentes resultados y son los más empleados.
2) Medios sintéticos: Son aquellos que contienen en su composición exclusivamente sustancias químicas conocidas y disueltas en agua destilada en proporciones determinadas, resultando un medio de composición perfectamente definida.
3) Medios semisintéticos: En este caso se aportan los factores de crecimiento bajo la forma de un extracto orgánico complejo.

a) naturales: son los preparados a partir de sustancias naturales de origen animal o vegetal, como extractos de tejidos o infusiones y cuya composición química no se conoce exactamente.
b) sintéticos: son los medios que contienen una composición química definida cualitativamente y cuantitativamente.

  
VI. MATERIALES Y MÉTODOS
La presente práctica se realizo en el laboratorio de microbiología del Instituto Tecnológico De Ciudad Altamirano
Primeramente se realizaron las soluciones stock, para ello se prepararon los componentes que formarían dicha solución en nuestro caso a nuestro equipo nos tocaron los quelatos que están compuestos por  Fe SO4 7H2O  y EDTA 2H2O tomando en cuenta que sería una concentración de 100x y un volumen de 200ml.
Fe SO4 7H2O = 0.0278
0.0278g x 100x 200ml/100ml = 0.556g
EDTA 2H2O = 0.0372
0.0372g X 100 X 200ml/200ml = 0.744g
Como siguiente paso pesamos los componentes (cabe mencionar que se peso exactamente los gramos que salieron después de las operaciones realizas en las cuales se tomo la concentración y el volumen en q se realizaron las disoluciones).
Fe SO4 7H2O = 0.0278
EDTA 2H2O = 0.0372
Seguidamente se disolvieron en agua con un volumen inicial de 50 ml de agua destilada en cada vaso de precipitado, esto para evitar que se rebasara el volumen permitido.
El Fe SO4 7H2O se disolvió en 50 ml de agua destilada y el Fe SO4 7H2O en 50 ml de agua destilada calentando un poco a baño de María, esto para q el 2H2O se disolviera perfectamente, y se dejo enfriar  por unos minutos.
Después se mezclaron las dos soluciones  y se agitan bien. Se completa con agua destilada hasta tener el volumen final q debe ser se 200ml.
Terminada la solución se deposito en una botella color ámbar la cual se etiqueto con el nombre de la solución y se guardo en el refrigerador.

Se pesara 0.556g de Fe SO4 7H2O y 0.744g de EDTA 2H2O
El Fe SO4 7H2O se disolverá en agua solamente agitándolo para q se disuelva bien
El  EDTA 2H2O se colocara en agua y se calentara a baño maría para que se disuelva bien. Se dejara enfrían unos minuto.
Después se mezclaran las soluciones agitándolas para una mezcla correcta
Cuando la solución esté terminada finalmente se depositara en una botella color ámbar y se etiquetará con el nombre de la solución y se depositara en el refrigerador.



VII. RESULTADOS



IMAGEN. 1 en esta imagen se muestran los dos reactivos que se utilizaron para preparar las soluciones de quelatos.






IMAGEN. 2 en esta imagen se muestra que el reactivo sulfato -férrico se peso adecuadamente 0.556g en la balanza. 























IMAGEN. 3 en esta imagen se muestra el segundo reactivo que es EDTA igualmente se peso adecuadamente 0.744g en la balanza. 






















IMAGEN. 4 en esta imagen se muestra que después de a ver pesado adecuadamente el EDTA posteriormente es calentado  a baño maría.













IMAGEN. 5 después de a ver calentado el EDTA por unos minutos posteriormente se mezclan bien ambas soluciones.



















IMAGEN. 6 en esta imagen se muestra las soluciones ya diluidas, posteriormente estas son aforadas con agua destilada a 200 ml, una vez aforadas estas soluciones son vaciadas a una botella color ámbar y esta en introducida a un refrigerador a 4º c. 












VIII. CONCLUCIONES Y RECOMENDACIONES
Para preparar soluciones stock se deben pesar con exactitud las sales necesarias para la solución, esto para que los vegetales no tengan carencia de algún nutriente y crezcan en la forma debida.


IX. FUENTES CONSULTADAS

·         Trabajo de tesis de maestría. http://www.ciad.mx/boletin/sepoct02/Efecto%20de
·         Encina C. L. Vitrificación de plantas cultivadas in vitro http://www.encuentros.uma.es/encuentros28/28vitrificacion.html
·         Montoya, H. L. M. 1991. Cultivo de tejidos vegetales. Universidad Nacional de Colombia.
·         http://www.revista.unam.mx/vol.6/num11/art104a/nov_art104a.pdf
·         http://www.espatentes.com/pdf/2274178_t3.pdf
·         http://es.wikipedia.org/wiki/Micropropagaci%C3%B3n



X. ANEXOS
En el anaquel deben estar acomodadas todas las soluciones de una forma que facilite su manejo y no se dificulte al momento de ocuparlas, ya que es perdida de tiempo en andar buscando las soluciones ya que se encuentran desordenados.